AAW™ 워크스테이션에서 Duolink® 분석법 자동화 방법
본 프로토콜은 AAW™ 자동화 분석 워크스테이션을 사용하여 Duolink® 분석을 자동화하는 방법을 상세히 설명합니다. 이 96웰 마이크로플레이트는 향상된 무인 운영 시간과 고처리량 기능을 제공합니다. 아래에서 세부 사항과 데이터를 확인하십시오.

듀오링크® 분석 자동화 소개
Opentrons® 기반 AAW™ 자동화 분석 워크스테이션은 분석 및 시료 전처리 공정 자동화를 위해 설계된 모듈식 로봇 액체 처리 시스템입니다. 본 응용 연구는 AAW™ 워크스테이션에서 Duolink® PLA 키트를 구현하는 과정과, 분석 기능성과 견고성을 유지하면서도 수동 작업 시간을 최소화하여 실험실 효율성을 높이는 프로토콜의 성능을 설명합니다.
Duolink® 분석법은 세포 내 단백질-단백질 상호작용을 시각화하는 근접 연결 분석법(PLA)입니다. 상보적인 DNA 올리고뉴클레오티드가 관심 단백질 특이 항체에 접합됩니다. 단백질이 근접 접촉하면 올리고뉴클레오티드의 리게이션 및 증폭 단계를 통해 단백질-단백질 복합체를 이미징할 수 있습니다. 이 분석법은 광범위한 훈련이 필요하지는 않지만, 확장성을 저해하는 많은 수동 단계가 필요하며, 이 분석법의 자동화는 실험실 효율성 향상에 도움이 될 수 있습니다.
자동화 및 Duolink® 재료 필요
실험실 용기
- Opentrons® 200 μL 팁 랙, 여과 처리됨 (제품 번호 99100105)
- (1일차: 1박스, 2일차: 3~4박스)
- Opentrons® 1,000 μL 팁 랙, 여과 처리됨 (제품 번호 99100106)
- (1일차: 1박스, 2일차: 2박스)
- NEST 딥웰 96-웰 플레이트 (Opentrons® 제품 번호 99900103)
- NEST 12-웰 리저버 (Opentrons® 제품 번호 99900076)
- NEST 290mL 1-웰 저장 용기 (Opentrons® 제품 번호 99900207)
- 분석 플레이트: 사각 웰 (Ibidi® 제품 번호 89626 또는 89627 권장) 또는 원형 웰 (Corning® 제품 번호 CLS3603 또는 유사 제품)
시약
- Duolink® 차단 용액 (제품 번호 DUO82007)
- 표적 단백질 특이적 1차 항체
- Duolink® PLA 프로브 (5배 농축) (1차 항체의 숙주 종과 일치하는 서로 다른 종의 PLUS 및 MINUS 각 1개)
- 항체 희석액 (제품 번호 DUO82008) – PLA 프로브 및 필요한 경우 1차 항체 희석용
- 연결용 저장액 (5배) – Milli-Q® 실험실용 정수 시스템과 같은 고순도 정수로 희석하여 1배 연결 완충액 (제품 번호 DUO92008 또는 유사 제품)을 제조
- 리가아제 (1 U/μL, 40x) – 리가이션 버퍼로 1x로 희석하여 리가이션 용액 제조 (제품 번호 DUO92008 또는 유사 제품)
- 증폭 스톡 (녹색, 주황색, 적색, 원적외선) (5배 농축액) (제품 번호 DUO92008 또는 동급) – 고순도 물에 희석하여 1배 증폭 버퍼 제조
- 참고: 아래 데이터는 적색 검출 시약을 사용함
- 폴리머라제 (10 U/μL, 80배) – 증폭 용액 제조를 위해 증폭 버퍼로 1배로 희석 (제품 번호 DUO92008 또는 유사 제품)
- 세척용 완충액 A 및 B (제품 번호 DUO82049)
- 검사를 시작하기 전에 한 포의 내용물을 고순도 물에 최종 부피 1,000 mL가 되도록 용해하여 준비해야 합니다. 용액은 단기 보관(2주 미만) 시 실온에서, 장기 보관 시 4°C에서 보관할 수 있습니다.
- 참고: 사용 전 용액을 실온으로 되돌려야 합니다.
- 0.01x 세척 버퍼 B
- 검사를 시작하기 전에 1x 세척 완충액 B를 고순도 물로 1:100 희석하여 준비해야 합니다.
- DAPI(10x)(제품 번호 DUO82064) - 고순도 물로 1x로 희석
- 안티페이드 (10배) (제품 번호 DUO82064) - 고순도 물로 1배로 희석
Duolink® 프로토콜 업로드
Millipore® 프로토콜 라이브러리에서 선택한 Duolink® PLA 96-웰 프로토콜을 다운로드하여 Opentrons® 앱에 업로드하십시오. 현재 이용 가능한 프로토콜은 1) 항체 농도 또는 양성/음성 대조군 검사를 위한 Duolink® 구성 요소 테스트 프로토콜 또는 2) 고객이 선택한 단일 항체 쌍 조합 및 농도로 최대 96개 샘플을 실행할 수 있는 Duolink® 멀티웰 플레이트 분석 프로토콜 중 하나를 선택할 수 있습니다. 각 프로토콜은 정사각형 또는 원형 96-웰 버전으로 제공됩니다.
- Duolink® 구성 요소 테스트 분석 1일차
- Duolink® 구성 요소 테스트 분석 2일차
- Duolink® 멀티웰 플레이트 1일차
- Duolink® 멀티웰 플레이트 2일차
AAW™ 워크스테이션 설정
AAW™ 워크스테이션을 사용하여 Duolink® PLA 분석을 자동화했습니다. 분석 프로토콜을 Python 코드로 변환하여 워크스테이션의 Opentrons® 앱으로 가져왔습니다. 기기는 모든 액체 처리 단계, 배양 및 교반 단계를 수행했습니다. 온도 모듈 옵션을 선택한 경우 모든 분석 단계가 무인 자동화됩니다. 선택하지 않은 경우, 필요에 따라 데크에 온도 민감성 시약을 추가하기 위해 3번의 간단한 수동 개입 단계가 필요합니다.
Duolink® 분석을 위한 장비 준비
- Millipore® 프로토콜 라이브러리에서 선택한 Duolink® 프로토콜 파일을 다운로드하고 위에서 설명한 대로 컴퓨터의 Opentrons® 앱에 로드하십시오. 그런 다음 "Send to Opentrons FLEX" 또는 "Start Set-up" 기능을 통해 프로토콜을 AAW™ 워크스테이션으로 전송할 수 있습니다.
- AAW™ 사용자 매뉴얼에 따라 적절한 위치에 적합한 모듈, 고정 장치 및 피펫이 장착되고 보정되었는지 확인하십시오.
- 프로토콜이 로봇으로 전송되면 프로토콜을 선택하고 "설정 시작" 버튼을 눌러 분석을 시작할 수 있습니다. 특정 분석 매개변수를 선택할 수 있는 매개변수 목록이 표시됩니다. 운영자는 변경할 수 있지만 기본 선택 사항이 설정되어 있습니다:
1일차
- 샘플 수: 1-96
- 참고: 풀 플레이트 프로토콜 선택 시에만 적용
- 드라이 런: 연습용으로 사용 시 활성화(기본값) 또는 비활성화(인큐베이션 및 세척 단계 단축)
- 데크 위 배양: 켜기(기본값), 끄기
- 플레이트 뚜껑 사용: 켜기(기본값), 끄기는 AAW™ Flex 그리퍼가 플레이트를 덮도록(ON) 하거나 사용자가 수동으로 플레이트를 덮도록(OFF) 선택할 수 있음
2일차
- 샘플 수: 1-96
- 드라이 런: 켜기 또는 끄기(기본값) - 배양 및 세척 단계를 단축한 연습용 실행으로 사용
- 데크에서 배양: 켜기(기본값), 끄기
- 플레이트 뚜껑 사용: 켜기(기본값), 끄기 선택 시 AAW™ Flex 그리퍼가 플레이트를 덮도록 설정(켜기)하거나 사용자가 수동으로 플레이트를 덮도록 설정(끄기)할 수 있음
- 온도 모듈 사용: 켜기(기본값), 끄기 선택 시 2일차 전체를 완전 무인화 가능. 미사용 시 온도 민감성 시약 추가를 위해 3단계 수동 개입 필요
- 실행 시작 전, 터치스크린 또는 Opentrons® 앱의 단계별 지침에 따라 실험 용기 위치 확인을 최소 한 번 수행해야 합니다. 실험 용기 오프셋이 확인되면 AAW™ 워크스테이션은 향후 실행을 위해 이 값을 저장하며, 원하는 경우를 제외하고는 반복할 필요가 없습니다. 실험 용기 위치 확인은 드라이 런 중 비어 있는 실험 용기로 실행하거나 시약이 준비된 실험 용기로 실행할 수 있습니다. 온도 모듈 선택 여부에 따라 올바른 실험 용기 위치 오프셋이 사용되도록 확인하십시오.
Duolink® 분석 설정 절차
Duolink® PLA는 멀티웰 플레이트용 제품 설명서에 따라 수동으로 수행하거나 AAW™ 워크스테이션의 조정된 프로토콜을 사용하여 수행했습니다(아래 참조). 어세이 모든 단계는 기기 데크에서 수행되었습니다. 온도 모듈이 선택된 경우, 2일차에 수동 개입 단계가 필요하지 않습니다. 선택되지 않은 경우, 온도에 민감한 리가제 및 중합효소/증폭 용액을 추가하기 위한 일시 정지가 프로토콜에 포함됩니다. 위에서 언급한 바와 같이, 각 프로토콜은 정사각형 또는 원형 96-웰 버전으로 제공됩니다. 정사각형 웰에서 실행되는 분석은 웰당 80µL의 시약 용량이 필요하며, 원형 웰에서는 웰당 40µL가 필요합니다. 100RXN Duolink® 키트는 원형 웰에 충분한 용량이지만, 정사각형 웰의 80µL 웰 용량을 고려할 경우 추가 시약 구매가 필요할 수 있습니다.
실행 전 준비
- 다중웰 플레이트에서 세포를 배양한 후 표준 면역염색 프로토콜에 따라 처리(기아, 자극 등), 세척 및 고정합니다. 1차 항체 조건은 시료 고정, 항원 회수, 차단 용액, 항체 희석액, 농도, 배양 온도 및 시간에 대해 최적화해야 합니다.
- 이 EGFR/HER2 적용을 위해 SK-OV3 세포를 멀티웰 플레이트(사각형 및 원형 웰)에서 배양하고, EGF로 자극한 후 Duolink® Control Kit 제품 정보 시트 및 멀티웰 플레이트 프로토콜의 지침에 따라 고정했습니다.
- AAW™ 워크스테이션에서 Duolink® 프로토콜을 실행하기 전에, 1차 항체가 세포 내 표적에 도달할 수 있도록 세포를 10분간 투과 처리해야 합니다(1´ PBS(제품 번호 P3813)에 0.2% Triton X-100(제품 번호 T8787) 용액).
- 세포를 PBS로 2분간 두 번 세척하고, 부드럽게 흔들어 준 후, 분석을 실행하기 직전에 플레이트에서 과잉 PBS를 즉시 제거하십시오.
1일차
시약 준비
1일차 시약 준비는 Duolink® PLA 형광 프로토콜을 따르십시오.
- Duolink® Component Testing Assay 또는 Duolink® Multiwell Plate Assay용 1차 항체 희석액을 준비하십시오. Duolink® Component Testing Assay를 사용하면 양성/음성 대조군 항체 조합을 확인하거나 다양한 항체 농도를 테스트할 수 있습니다.
- EGFR/HER2 Duolink® 구성 요소 테스트 분석의 경우, 1차 항체(마우스 항-EGFR(제품 번호 E3138) 및 토끼 항-ErbB2/HER2(제품 번호 HPA001383))를 Duolink® PLA 항체 희석제(제품 번호 DUO82008)로 각각 최종 농도 1:100 및 1:5,000이 되도록 희석하였습니다. 테스트된 항체 조건은 음성 대조군 -EGFR/-HER2, +HER2/-EGFR, -HER2/+EGFR 및 양성 대조군 +HER2/+EGFR이었습니다.
- 96개 샘플 EGFR/HER2 Duolink® 멀티웰 플레이트 분석을 위해, 1차 항체(마우스 항-EGFR 항체 및 토끼 항-ErbB2/HER2)를 Duolink® PLA 항체 희석제(제품 번호 DUO82008)로 각각 최종 농도 1:100 및 1:5,000이 되도록 희석했습니다. 양성 대조군 +HER2/+EGFR 1차 항체로 전체 플레이트를 실행했습니다.
- 항체는 분석 실행 유형(구성 요소 테스트 대 멀티웰 플레이트)에 따라 NEST Deep Wall Reagent Plate에 로드됩니다.
- 구성 요소 테스트 분석의 경우: 4 세트의 양성 또는 음성 대조군 항체(또는 농도)를 A1-D1 웰에 로드합니다.
- 멀티웰 플레이트 분석의 경우: 단일 항체 용액을 A1-H1 웰에 로드합니다.
참고: 분석 실행 유형별 분석 용량은 분석 시작 시 앱 또는 터치 스크린에 표시됩니다. 샘플 수가 96개가 아닌 경우, 정확한 필요한 용량은 Opentrons® 앱 또는 터치 스크린을 참조하십시오.
- Duolink® 차단 용액은 시약 플레이트의 A2-H2 웰에 첨가해야 합니다. 프로토콜 시작 시 앱 또는 터치스크린에서 용량을 확인할 수 있습니다.
로봇 데크 구성 및 자동화 분석 프로토콜
- 모든 시약을 NEST Deep 96-well 시약 플레이트의 해당 웰에 배치한 후, 아래 목록과 그림 1, 그림 2에 표시된 대로 실험 용기를 데크의 적절한 위치에 배치할 수 있습니다:
- B2 위치에 P200 팁 1박스
- B3 위치에 P1000 팁 1박스
- C1 위치: NEST Deep 96-웰 시약 플레이트
- C2 위치에 샘플 플레이트
- C4 위치: 샘플 플레이트 뚜껑
- D2에 NEST 290mL 저장조

그림 1. 1일차 대조군 플레이트 데크.듀오링크® 구성품 테스트 1일차 덱 배치 구성도. 듀오링크® 구성품 테스트 1일차 실험용 기기 및 하드웨어 위치를 표시한 AAW™ 덱 설정 구성도.

그림 2. 1일차 전체 플레이트 데크.Duolink® 멀티웰 플레이트 분석법 1일차 데크 배치 구성도. Duolink® 멀티웰 플레이트 분석법 1일차 실험 용기 및 하드웨어 위치를 보여주는 AAW™ 데크 설정 구성도.
- 모든 실험용 기구가 제자리에 배치되면 로봇 도어를 닫을 수 있습니다. 이후 상기 AAW™ 워크스테이션 설정 섹션에 설명된 대로 설정 시작 버튼을 선택하고, 매개변수를 선택한 후 (아직 수행하지 않았다면) 실험용 기구 위치 검사를 수행할 수 있습니다. 설정 시작 기능이 이미 활성화되고 매개변수가 선택된 경우, 파란색 "실행 화살표"를 선택하여 분석을 시작할 수 있습니다.
- 이제 AAW™ 워크스테이션이 프로토콜을 실행합니다.
- 프로그램이 완료되면, 1차 항체가 추가된 분석 플레이트가 C2에서 준비되어 4°C에서 오프덱(off-deck) 하룻밤 배양을 기다립니다.
2일차
시약 준비
온도 모듈을 사용하는 경우, 모든 용액은 분석 시작 시에 제조하여 자동 분석이 진행되는 동안 4 °C로 유지할 수 있습니다.
온도 모듈을 사용하지 않는 경우, 사용 직전에 구성 요소를 준비하고 내장 프로그램의 지시에 따라 일시 정지된 동안 시약 웰에 첨가하십시오.
시약 준비에는 Duolink® PLA 형광 프로토콜을 따르십시오. 시약의 부피는 Opentrons® 앱 또는 AAW™ 터치스크린에서 분석 시작 시 확인할 수 있습니다.
- PLA 프로브를 시약 딥 웰 플레이트의 A1-H1 웰에 넣으십시오.
- 준비된 리가아제 용액(1x 리가아제 + 1x 리가아제 버퍼)을 시약 딥웰 플레이트의 A2-H2 웰에 넣으십시오.
- 준비된 증폭 용액(1x 폴리머라제 + 1x 증폭 버퍼)을 시약 딥웰 플레이트의 A3-H3 웰에 넣으십시오.
- 시약 딥웰 플레이트의 A4-H4 웰에 1x DAPI 핵 염색액을 넣으십시오.
- 시약 딥웰 플레이트의 A5-H5 웰에 1x 안티페이드를 넣으십시오.
- 세척 버퍼
- 세척 버퍼 A
- Duolink® 구성 요소 테스트 플레이트: NEST 12-웰 저장소의 웰 1-6
- Duolink® 멀티웰 플레이트: NEST 290mL 저장소
- 세척 버퍼 B
- Duolink® 성분 테스트 플레이트: NEST 12-웰 저장소의 웰 7-8
- Duolink® 멀티웰 플레이트: NEST 12-웰 저장소의 웰 1-4
- 세척 버퍼 0.1x B
- Duolink® 구성 요소 테스트 플레이트: NEST 12-웰 저장소의 웰 9
- Duolink® 멀티웰 플레이트: NEST 12-웰 리저버의 웰 5-6
- PBS
- Duolink® 성분 테스트 플레이트: NEST 12-웰 리저버의 웰 10
- Duolink® 멀티웰 플레이트: NEST 12-웰 리저버의 웰 7-8
- 세척 버퍼 A
로봇 데크 구성 및 자동화 분석 프로토콜
- 모든 시약이 NEST Deep 96-웰 시약 플레이트의 적절한 웰에 배치되면, 아래에 나열되고 그림 3 및 그림 4에 표시된 대로 실험 용기를 데크의 적절한 위치에 배치할 수 있습니다:
- Duolink® 구성 요소 테스트 분석을 위한 A1, A2, B1, B2 위치에 P200 팁 4박스 또는 Duolink® 멀티웰 플레이트 분석을 위한 A1, A2, B1 위치에 P200 팁 3박스
- A3 및 B3 위치에 P1000 팁 2박스
- C1 위치에 NEST Deep 96-웰 시약 플레이트 (온도 모듈 유무 선택 가능)
- C2의 샘플 플레이트(사각형 또는 원형 96-웰 플레이트) 및 C4의 샘플 플레이트 뚜껑
- Duolink® Component Testing assay용 C3의 NEST 12-well Reservoir 세척 버퍼
- Duolink® 멀티웰 플레이트 분석용, B2의 세척 버퍼 NEST 12-웰 리저버 및 C3의 NEST 290mL 리저버
- D2에 비어 있는 NEST 290mL 저장조

그림 3. 2일차 대조군 플레이트 데크.듀오링크® 구성품 테스트 2일차 데크 배치 구성도. 듀오링크® 구성품 테스트 2일차 실험 기구 및 하드웨어 위치를 보여주는 AAW™ 데크 설정 구성도.

그림 4. 2일차 전체 플레이트 데크.Duolink® 멀티웰 플레이트 분석법 2일차 데크 배치 구성도. Duolink® 멀티웰 플레이트 분석법 2일차 실험 용기 및 하드웨어 위치를 보여주는 AAW™ 데크 설정 구성도.
- 시작 설정 기능이 이미 활성화되고 매개변수가 선택된 경우, 파란색 "실행 화살표"를 선택하여 분석을 시작할 수 있습니다.
- AAW™ 워크스테이션이 이제 프로토콜을 실행합니다.
- 온도 모듈을 사용하는 경우 수동 개입이 필요하지 않습니다.
- 온도 모듈을 사용하지 않는 경우, 온도에 민감한 시약(리가제, 중합효소 등)을 추가하라는 프롬프트와 함께 프로토콜 일시 정지 기능이 내장되어 있습니다. 터치스크린에는 다음 일시 정지 단계까지의 시간이 표시되므로, 작업을 조정하고 자리를 비울 수 있습니다.
- 프로그램이 완료되면 분석 플레이트는 형광 이미징을 위해 C2에서 준비됩니다.
자동화 Duolink® 분석 대 수동 분석 결과
자동화 Duolink® 프로토콜은 사각형 및 원형 멀티웰 플레이트에서 EGFR-HER2 제어 키트 시약을 사용하여 테스트되었습니다. Duolink® 구성 요소 테스트 분석은 EGF 처리된 SK-OV3 세포의 음성 대조군(1차 EGFR/HER2 항체 없음) 및 양성 대조군(EGFR/HER2 항체 모두)을 대상으로 수행되었습니다. Duolink® 구성 요소 테스트 프로토콜을 사용한 EGFR-HER2 제어 키트 분석의 수동 및 AAW™ 워크스테이션 성능에 대한 형광 이미지는 음성 대조군에서 EGFR-HER2 공동 국소화가 없음을, 양성 대조군에서 공동 국소화(점상)가 있음을 보여줍니다(그림 5). 이 결과는 여러 실행과 두 가지 플레이트 형상 유형 모두에서 재현 가능했습니다(그림 6). ImageJ 분석을 통해 양성 염색 영역 비율에 대한 반정량적 평가를 수행하였습니다(그림 7).

그림 5.EGF 처리된 SK-OV3 세포에서 EGFR-HER2 단백질-단백질 상호작용의 대표 형광 이미지. Duolink® 제어 분석 프로토콜은 EGF 처리된 세포에 대해 수동 또는 AAW™ 워크스테이션을 사용하여 수행되었습니다. 수동 및 자동 분석 간에 음성 대조군(-/-)과 양성 대조군(+/+) 모두 유사한 EGFR-HER2 공동 국소화 패턴(주황색 점상 구조)이 관찰되었습니다. GE In Cell Imager 2200으로 40배율 촬영. DAPI 염색은 파란색. 세로 열 구성: 수동, 자동 실행 1, 자동 실행 2. 가로 열 구성: -/- HER2/EGFR, +/- HER2/EGFR, -/+ HER2/EGFR, +/+ HER2/EGFR.

그림 6.AAW™ EGFR-HER2 단백질-단백질 상호작용 자동화 시스템은 사각형 및 원형 멀티웰 플레이트 모두와 호환됩니다. 사각형 웰과 원형 96-웰 멀티웰 플레이트 간에 음성 대조군(-/-)과 양성 대조군(+/+) 모두에서 유사한 EGFR-HER2 공동 국소화(적색 점상 구조) 패턴이 관찰되었습니다. GE In Cell Imager 2200으로 40배율, BioTek® Cytation 5로 20배율 촬영. DAPI 염색은 파란색으로 표시됨. (상단 행) 사각형 웰, (하단 행) 원형 웰. 세로 행 구성: -/- HER2/EGFR, +/- HER2/EGFR, -/+ HER2/EGFR, +/+ HER2/EGFR.

그림 7.사각 및 원형 멀티웰 플레이트에서 EGFR-HER2 공동 국소화의 양성 염색 영역 비율 평가. A) AAW™ 워크스테이션 자동화 대 수동 실행 테스트를 위한 사각 웰 플레이트에서의 대조군 EGFR-HER2 분석. EGFR-HER2 공동 국소화 양성 염색 면적 평균 백분율은 ImageJ 분석으로 측정되었으며, 양성(+/+) 대조군은 사각형 웰 플레이트에서 수동 및 자동 분석 모두 음성 대조군보다 높은 EGFR-HER2 염색을 나타냄을 확인함. B) AAW™ 워크스테이션 자동화 대 수동 실행 비교를 위한 원형 웰 플레이트에서의 대조군 EGFR-HER2 분석. 원형 웰 플레이트에서도 사각형과 유사한 결과가 관찰됨.
AAW™ 워크스테이션 자동화 Duolink® 분석법은 Duolink® Component Testing 프로토콜을 이용한 항체 검사와 Duolink® Multiwell Plate 프로토콜을 이용한 샘플 스크리닝(최대 96개 입력)을 모두 수행할 수 있습니다. 본 연구에서는 Duolink® Multiwell Plate 프로토콜을 EGF 처리 대조군 대비 미처리 SK-OV3 세포(각 48웰)에 적용하여 평가하였습니다. EGF 처리군과 미처리군의 EGFR-HER2 공위화(colocalization)를 나타내는 대표 형광 이미지는 그림 8a에 제시되어 있습니다. 양성 염색 영역 비율(%)을 통한 공위화의 반정량적 평가 결과, EGF 처리군에서 통계적으로 유의미하게 높은 EGFR-HER2 상호작용(약 2.5배)이 관찰되었습니다(그림 8b).

그림 8.EGF 처리 시 EGFR-HER2 염색이 현저히 증가한다. A) (상단) EGF 처리된 SK-OV3 세포 48개 샘플과 (하단) 미처리 세포 48개 샘플에 대해 수행된 풀 플레이트 자동화 분석의 대표 이미지. EGF 처리 세포는 미처리 세포보다 더 강력한 염색을 나타냈다. GE In Cell Imager 2200으로 40배율 촬영. DAPI: 파란색, EGFR-HER2: 주황색. B) EGFR-HER2 공위화 점의 염색 면적 비율 정량화는 EGF 처리가 미처리 세포 대비 단백질-단백질 상호작용을 통계적으로 증가시킴을 확인함(양측 t-검정, p<0.003, N=48/조건).
마지막으로, 자동화 분석법과 수동 분석법의 분석 시간 및 무인 작업 시간을 종합하여 비교했습니다. 사이클 시간은 매우 유사하지만, 주요 이점은 작업 시간이 단축된다는 점입니다. Duolink® 검사는 1일차에 약 1.5시간, 2일차에 5~7시간이 소요됩니다. 자동화 프로토콜을 적용하면 이 시간의 95%가 무인 작업이며, 온도 모듈을 도입할 경우 100% 무인 작업이 가능합니다.
요약
본 문서는 AAW™ 자동화 분석 워크스테이션에서 Duolink® 근접 리게이션 분석 기술을 활용하는 방법을 제시하며, 워크어웨이 프로토콜이 숙련된 사용자의 수동 작업과 동등한 성능을 발휘함을 보여줍니다.
아래에서 AAW™ 워크스테이션에 대한 추가 정보를 요청하십시오.