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Wählen Sie konfigurierbare Panels & Premixed-Kits - ODER - Kits für die zelluläre Signaltransduktion & MAPmates™
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Konfigurierbare Panels & Premixed-Kits
Unser breites Angebot enthält Multiplex-Panels, für die Sie die Analyten auswählen können, die am besten für Ihre Anwendung geeignet sind. Unter einem separaten Register können Sie das Premixed-Cytokin-Format oder ein Singleplex-Kit wählen.
Kits für die zelluläre Signaltransduktion & MAPmates™
Wählen Sie gebrauchsfertige Kits zur Erforschung gesamter Signalwege oder Prozesse. Oder konfigurieren Sie Ihre eigenen Kits mit Singleplex MAPmates™.
Die folgenden MAPmates™ sollten nicht zusammen analysiert werden: -MAPmates™, die einen unterschiedlichen Assaypuffer erfordern. -Phosphospezifische und MAPmate™ Gesamtkombinationen wie Gesamt-GSK3β und Gesamt-GSK3β (Ser 9). -PanTyr und locusspezifische MAPmates™, z.B. Phospho-EGF-Rezeptor und Phospho-STAT1 (Tyr701). -Mehr als 1 Phospho-MAPmate™ für ein einziges Target (Akt, STAT3). -GAPDH und β-Tubulin können nicht mit Kits oder MAPmates™, die panTyr enthalten, analysiert werden.
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Wählen Sie bitte Spezies, Panelart, Kit oder Probenart
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Custom Premix Selecting "Custom Premix" option means that all of the beads you have chosen will be premixed in manufacturing before the kit is sent to you.
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Spezies
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Gewähltes Kit
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St./Pkg.
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96-Well Plate
Menge
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Weitere Reagenzien hinzufügen (MAPmates erfordern die Verwendung eines Puffer- und Detektionskits)
Menge
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48-602MAG
Buffer Detection Kit for Magnetic Beads
1 Kit
Platzsparende Option Kunden, die mehrere Kits kaufen, können ihre Multiplex-Assaykomponenten in Kunststoffbeuteln anstelle von Packungen erhalten, um eine kompaktere Lagerung zu ermöglichen.
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cellculturesystems OR proteinsamplepreparation OR chromatographysamplepreparation
Mammalian LGN/AGS3 proteins and their Drosophila Pins orthologue are cytoplasmic regulators of G-protein signaling. In Drosophila, Pins localizes to the lateral cortex of polarized epithelial cells and to the apical cortex of neuroblasts where it plays important roles in their asymmetric division. Using overexpression studies in different cell line systems, we demonstrate here that, like Drosophila Pins, LGN can exhibit enriched localization at the cell cortex, depending on the cell cycle and the culture system used. We find that in WISH, PC12, and NRK but not COS cells, LGN is largely directed to the cell cortex during mitosis. Overexpression of truncated protein domains further identified the Galpha-binding C-terminal portion of LGN as a sufficient domain for cortical localization in cell culture. In mitotic COS cells that normally do not exhibit cortical LGN localization, LGN is redirected to the cell cortex upon overexpression of Galpha subunits of heterotrimeric G-proteins. The results also show that the cortical localization of LGN is dependent on microfilaments and that interfering with LGN function in cultured cell lines causes early disruption to cell cycle progression.
The aim of the current study was to evaluate primary (human bronchial epithelial cells, HBEC) and non-primary (Calu-3, BEAS-2B, BEAS-2B R1) bronchial epithelial cell culture systems as air-liquid interface- (ALI-) differentiated models for asthma research. Ability to differentiate into goblet (MUC5AC+) and ciliated (β-Tubulin IV+) cells was evaluated by confocal imaging and qPCR. Expression of tight junction/adhesion proteins (ZO-1, E-Cadherin) and development of transepithelial electrical resistance (TEER) were assessed. Primary cells showed localised MUC5AC, β-Tubulin IV, ZO-1, and E-Cadherin and developed TEER with, however, a large degree of inter- and intradonor variation. Calu-3 cells developed a more reproducible TEER and a phenotype similar to primary cells although with diffuse β-Tubulin IV staining. BEAS-2B cells did not differentiate or develop tight junctions. These data highlight the challenges in working with primary cell models and the need for careful characterisation and selection of systems to answer specific research questions.
Mutations in the gene NPHS2 are the most common cause of hereditary steroid-resistant nephrotic syndrome. Its gene product, the stomatin family member protein podocin represents a core component of the slit diaphragm, a unique structure that bridges the space between adjacent podocyte foot processes in the kidney glomerulus. Dislocation and misexpression of slit diaphragm components have been described in the pathogenesis of acquired and hereditary nephrotic syndrome. However, little is known about mechanisms regulating cellular trafficking and turnover of podocin. Here, we discover a three amino acids-comprising motif regulating intracellular localization of podocin in cell culture systems. Mutations of this motif led to markedly reduced degradation of podocin. These findings give novel insight into the molecular biology of the slit diaphragm protein podocin, enabling future research to establish the biological relevance of podocin turnover and localization.