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Wählen Sie konfigurierbare Panels & Premixed-Kits - ODER - Kits für die zelluläre Signaltransduktion & MAPmates™
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Konfigurierbare Panels & Premixed-Kits
Unser breites Angebot enthält Multiplex-Panels, für die Sie die Analyten auswählen können, die am besten für Ihre Anwendung geeignet sind. Unter einem separaten Register können Sie das Premixed-Cytokin-Format oder ein Singleplex-Kit wählen.
Kits für die zelluläre Signaltransduktion & MAPmates™
Wählen Sie gebrauchsfertige Kits zur Erforschung gesamter Signalwege oder Prozesse. Oder konfigurieren Sie Ihre eigenen Kits mit Singleplex MAPmates™.
Die folgenden MAPmates™ sollten nicht zusammen analysiert werden: -MAPmates™, die einen unterschiedlichen Assaypuffer erfordern. -Phosphospezifische und MAPmate™ Gesamtkombinationen wie Gesamt-GSK3β und Gesamt-GSK3β (Ser 9). -PanTyr und locusspezifische MAPmates™, z.B. Phospho-EGF-Rezeptor und Phospho-STAT1 (Tyr701). -Mehr als 1 Phospho-MAPmate™ für ein einziges Target (Akt, STAT3). -GAPDH und β-Tubulin können nicht mit Kits oder MAPmates™, die panTyr enthalten, analysiert werden.
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Wählen Sie bitte Spezies, Panelart, Kit oder Probenart
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Custom Premix Selecting "Custom Premix" option means that all of the beads you have chosen will be premixed in manufacturing before the kit is sent to you.
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Ordering Description
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Spezies
Panelart
Gewähltes Kit
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St./Pkg.
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96-Well Plate
Menge
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Weitere Reagenzien hinzufügen (MAPmates erfordern die Verwendung eines Puffer- und Detektionskits)
Menge
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48-602MAG
Buffer Detection Kit for Magnetic Beads
1 Kit
Platzsparende Option Kunden, die mehrere Kits kaufen, können ihre Multiplex-Assaykomponenten in Kunststoffbeuteln anstelle von Packungen erhalten, um eine kompaktere Lagerung zu ermöglichen.
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River water and wastewater treatment plant (WWTP) effluents from metropolitan Taipei, Taiwan were tested for the presence of the pollutants estrone (E1), estriol (E3), 17β-estradiol (E2), and 17α-ethinylestradiol (EE2) using a new methodology that involves high-flow solid-phase extraction and liquid chromatography/tandem mass spectrometry. The method was also used to investigate the removal of the analytes by conventional drinking water treatment processes. Without adjusting the pH, we extracted 1-L samples with PolarPlus C18 Speedisks under a flow rate exceeding 100 mL/min, in which six samples could be done simultaneously using an extraction station. The adsorbent was washed with 40% methanol/60% water and then eluted by 50% methanol/50% dichloromethane. The eluate was concentrated until almost dry and was reconstituted by 20 μL of methanol. Quantitation was done by LC-MS/MS-negative electrospray ionization in the selected reaction monitoring mode with isotope-dilution techniques. The mobile phase was 10 mM N-methylmorpholine aqueous solution/acetonitrile with gradient elution. Mean recoveries of spiked Milli-Q water were 65–79% and precisions were within 2–20% of the tested concentrations (5.0–200 ng/L). The method was validated with spiked upstream river water; precisions were most within 10% of the tested concentrations (10–100 ng/L) with most RSDs < 10%. LODs of the environmental matrixes were 0.78–7.65 ng/L. A pre-filtration step before solid-phase extraction may significantly influence the measurement of E1 and EE2 concentrations; disk overloading by water matrix may also impact analyte recoveries along with ion suppression. In the Taipei water study, the four steroid estrogens were detected in river samples (ca. 15 ng/L for E2 and EE2 and 35−45 ng/L for E1 and E3). Average levels of 19–26 ng/L for E1, E2, and EE2 were detected in most wastewater effluents, while only a single effluent sample contained E3. The higher level in the river was likely caused by the discharge of untreated human and farming waste into the water. In the drinking water treatment simulations, coagulation removed 20–50% of the estrogens. An increased dose of aluminum sulfate did not improve the performance. Despite the reactive phenolic moiety in the analytes, the steroids were decreased only 20–44% of the initial concentrations in pre- or post-chlorination. Rapid filtration, with crushed anthracite playing a major role, took out more than 84% of the estrogens. Except for E3, the whole procedure successfully removed most of the estrogens even if the initial concentration reached levels as high as 500 ng/L.
Abnormally enlarged blood vessels underlie many life-threatening disorders including arteriovenous (AV) malformations (AVMs). The core defect in AVMs is high-flow AV shunts, which connect arteries directly to veins, "stealing" blood from capillaries. Here, we studied mouse brain AV shunts caused by up-regulation of Notch signaling in endothelial cells (ECs) through transgenic expression of constitutively active Notch4 (Notch4*). Using four-dimensional two-photon imaging through a cranial window, we found that normalizing Notch signaling by repressing Notch4* expression converted large-caliber, high-flow AV shunts to capillary-like vessels. The structural regression of the high-flow AV shunts returned blood to capillaries, thus reversing tissue hypoxia. This regression was initiated by vessel narrowing without the loss of ECs and required restoration of EphB4 receptor expression by venous ECs. Normalization of Notch signaling resulting in regression of high-flow AV shunts, and a return to normal blood flow suggests that targeting the Notch pathway may be useful therapeutically for treating diseases such as AVMs.